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人脂肪间充质干细胞成脂分化试剂盒

货号:CHEM-200002
供应商:上海麒盟生物科技有限公司
数量:1
保质期:12月
麒盟干细胞研究中心隆重推出干细胞培养与鉴定的系列产品,为服务间充质干细胞研究人员,特展示一下产品,供有需要的朋友参考和方便购买。产品介绍间充质干细胞(MSC)具有多向分化的潜能,体外在一定条件下可以诱导分化为脂肪细胞、成骨细胞、成软骨细胞。2006年国际细胞治疗协会(ISCT)确定此三项检测指标是MSC鉴定的必检项目,目前以MSC为基础的研究报道均会对该三个指标进行鉴定。为方便科研用户鉴定MSC的分化能力,麒盟干细胞研究中心精心优化MSC成脂诱导分化试剂盒,其中包括成脂诱导培养体系和鉴定所需要的染色液,让用户可以稳定有效地鉴定MSC的分化潜能。该试剂盒提供的实验方法为常规鉴定方法,用于鉴定MSC是否具有成骨分化能力。除此以外,试剂盒的诱导培养基还可用于诱导分化过程中的其他检测,如mRNA检测、lncRNA检测、microRNA检测、蛋白表达检测、免疫组化检测等。但若用于免疫荧光检测需注意脂肪颗粒导致的自发荧光或遮光问题。产品信息产品名称:人脂肪间充质干细胞成脂分化试剂盒货号:CHEM-200005批号:见包装试剂清单:
序号名称数量货号
A人脂肪间充质干细胞成脂分化基础培养基A88ml×1CHEM-200005-A
B人脂肪间充质干细胞成脂分化血清10ml×2CHEM-200005-B
C双抗1ml×2CHEM-200005-C
D胰岛素200μl×2CHEM-200005-D
E3-异丁基-1-甲基黄嘌呤100μl×1CHEM-200005-E
F罗格列酮100μl×1CHEM-200005-F
G地塞米松100μl×1CHEM-200005-G
H人脂肪间充质干细胞成脂分化基础培养基B90ml×1CHEM-200005-H
I油红O染色液(储液)5ml×1CHEM-200005-I
J明胶溶液20ml×1CHEM-100001-20ML
 存储与有效期:A、D、H、I、J液于2-8℃避光保存,其余溶液于-20℃避光保存。所有组分均需要避免反复冻融及复温,各组分在所需要的温度下有效期为1年,配制完成的完全培养基于2-8℃保存,有效期为1个月。产品介绍人脂肪间充质干细胞(hAMSC)具有多向分化的潜能,体外在一定条件下可以诱导分化为脂肪细胞、成骨细胞、成软骨细胞。2006年国际细胞治疗协会(ISCT)确定此三项检测指标是MSC鉴定的必检项目,目前以MSC为基础的研究报道均会对该三个指标进行鉴定。为方便科研用户鉴定MSC的分化能力,麒盟干细胞研究中心精心优化hAMSC成脂诱导分化试剂盒,其中包括成脂诱导培养体系和鉴定所需要的染色液,让用户可以稳定有效地鉴定hAMSC的分化潜能。该试剂盒提供的实验方法为常规鉴定方法,用于鉴定hAMSC是否具有成骨分化能力。除此以外,试剂盒的诱导培养基还可用于诱导分化过程中的其他检测,如mRNA检测、lncRNA检测、microRNA检测、蛋白表达检测、免疫组化检测等。但若用于免疫荧光检测需注意脂肪颗粒导致的自发荧光或遮光问题。本产品仅适用于科研。操作方法实验准备² 试剂配制:2-8℃冰箱中过夜溶解B液一支。注意:解冻后的血清有时会出现沉淀,这些沉淀不影响血清的质量,不必做过滤等处理。诱导液A:室温融化C、E、F、G溶液各一支,将融化的溶液加入A液中,然后将B、D液加入A液中,晃动培养基使其充分混匀,配制成诱导液A。诱导液B:将B、D液加入H液中,晃动培养基使其充分混匀,配置成诱导液B。油红O染液(工作液):取油红O储液,与蒸馏水以3:2的比例混合均匀,中性滤纸过滤,即配制成了油红O染液(工作液)。注意:溶液溶解后旋涡混匀、1000g短时离心以使溶液集中于管底。将管内溶液加入A/H液后,吸取A/H液洗涤溶液瓶两次,将洗涤液加入A/H液中。所有液体混合成诱导完全培养基后必须充分混匀,2-8℃保存。E液较难溶解,需提前复温,反复摇动,在加入A液前须保证完全溶解。诱导液B可在需要时现配。整个过程需无菌操作,适当以75%酒精擦拭表面。² 培养皿处理:加适量明胶溶液到培养器皿中,轻轻摇动使其覆盖整个培养器皿底面,室温静置30-60分钟。弃去明胶溶液,室温晾干。注意:本试剂盒建议使用六孔板操作,每孔加明胶溶液1ml,使用其他培养器皿时需考虑实验结果的稳定性。整个过程需在超净工作台中操作,避免污染。² 自备试剂:l 消化液(0.25%Trypsin-0.04%EDTA)l 磷酸盐缓冲液(DPBS)l hAMSC完全培养基l 4%中性多聚甲醛溶液注意:若hAMSC完全培养基不含血清,则需要准备胰酶抑制剂。hAMSC消化极易过度,建议稀释消化液一倍,且严格控制消化时间。操作步骤1.     准备所需诱导分化的hAMSC,当细胞融合达85%左右时,用消化液消化细胞,并用hAMSC完全培养基重悬。2.     按照3×104cells/cm2的密度将细胞接种于已明胶处理的六孔板中,每孔hAMSC完全培养基2ml,37℃、5%CO2培养箱中培养。注意:细胞密度为该试剂盒的标准密度,若修改细胞接种密度则需要考虑实验结果的稳定性。3.     当细胞融合达90%以上时,弃去原培养上清,添加诱导液A2ml/well,37℃、5%CO2培养箱中培养。注意:成脂诱导后细胞易脱壁,换液时完全培养基必须经37℃复温。添加培养基时动作要轻柔,避免吹起细胞。4.     诱导培养72h后弃去原培养上清,添加诱导液B2ml/well,37℃、5%CO2培养箱中培养。5.     诱导培养24h后弃去原培养上清,添加诱导液A2ml/well,37℃、5%CO2培养箱中培养。6.     重复步骤4、5约3-5次,待细胞内出现明显脂滴时更换为诱导液B继续培养。7.     每2天更换新鲜诱导液B,继续培养至脂滴足够大时培养结束。注意:换液时诱导液必须经过复温,否则影响诱导效果和可能导致细胞脱壁。根据实验需要选择培养结束时间,若成脂面积过大或脂滴过大导致连成片则不利于结果的呈现,建议提前终止。8.     诱导培养结束时,弃去培养上清,DPBS洗细胞两次,4%中性多聚甲醛溶液2ml/well室温固定细胞20分钟。注意:培养结束时或中途可以选择其他检测方法,如基因表达检测等,若采用自己拟定的检测方法则后续方案需要自己拟定。9.     弃去固定液,DPBS洗2次,加入油红O染液1ml/well染色15分钟。注意:该步骤适用于鉴定成脂能力,若出现脂滴(脂肪细胞)则会呈现红色着色。若需要得到美观的图片,则染色时间需自己掌握。10. 弃去油红O染液,DPBS洗3次。11. 显微镜下观察并拍照。12. 结果判定:按照程序操作完毕,低倍镜下观察可见大面积红色着色点,20倍和40倍镜下可观察到红色球形在细胞内的情况,此红色着色球为脂滴,说明实验所用的hAMSC具有成脂能力。否则,所使用的hAMSC无成脂能力。结果展示\"\"  \"\"相关产品
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 本产品仅适用于科研。 
欢迎关注麒盟生物。\"\"温馨提示:不可用于临床治疗。
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