| 货号: | 暂无 |
| 是否单克隆: | 0 |
| 抗原来源: | 0 |
| 宿主: | 0 |
| 数量: | 大量 |
Santa Cruz生物技术公司为第一抗体提供了高品质的支持产品。包括用于WB和IHC的自产的第二抗体,用于IP研究的发光试剂,琼脂糖标记proteinA,proteinG PLUS和proteinL,用于WB的胞核提取,全细胞溶解物,组织提取试剂,WB膜,TransCruz凝胶迁移寡核苷酸,封闭物和实验室常用试剂。提供用于WB的Cruz MarkerTM分子量标准和预染分子量标准。ImmunoCruz染色系统用于IHC(石蜡切片)染色,为预稀释,即用系统。还介绍一系列凋亡检测试剂盒。支持产品主要涵盖以下方面:1)WB 2)IP 3)IP/WB 4)免疫复合蛋白激酶检测 5)免疫过氧化物酶细胞染色 6)免疫荧光细胞染色 7)流式细胞技术(FCM)8)ELISA检测 9)TransCruz凝胶超迁移实验 10)用多肽中和抗体活性的方法 11)染色质免疫沉淀(ChIP)实验 12)siRNA转染 13)半定量RT-PCR 14)溶液配制。
1. WB
A.样品准备
注意:细胞培养基产品包括经典和特殊培养基,血清,培养基添加物,诱导物,抗生素。产品列表和代理商信息请登陆网站www.scbt.com。
单层细胞
l 室温下,移去培养基并用PBS冲洗直径100mm的培养皿。以下步骤均在冰上或4℃操作,使用冰预冷的新鲜缓冲液。
l 加入0.6ml RIPA裂解液(sc-24948)。4℃轻轻晃动细胞培养皿15min。用细胞刮将贴壁细胞刮下。转移裂解液至微量离心管内。
l 用0.3ml RIPA裂解液洗一次培养皿,将洗液与之前的溶解物合并。(可选择:加入10μl 10mg/ml PMSF(sc-3597)储存液和/或用21号注射器针头切割DNA)冰上孵育30-60min。
l 将细胞溶解物4℃离心,10000×g,10min。转移汉细胞裂解物的上清至新的离心管内,弃沉淀。
注意:涉及磷酸化作用研究时,可用PhosphoCruTM蛋白纯化试剂盒(sc-24964)富集纯化细胞溶解物中的磷酸化蛋白。
悬浮细胞
l 室温低速离心5min,收集约2.0×107个细胞。小心除去培养基。
l 室温下用PBS冲洗细胞沉淀,再次低速离心5min,小心除去培养基。
l 加入1.0ml冰预冷的RIPA裂解液(sc-24948),裂解液中现用现加入蛋白酶抑制剂和/或磷酸酶抑制剂。用移液器轻轻悬浮细胞,冰上孵育30min。
l 用21号注射器针头、杜恩斯匀浆器或超声进一步破坏使细胞均质化。注意不要使裂解物温度过高。(可选择:加入10μl 10mg/ml PMSF(sc-3597)储存液。)冰上孵育30min。
l 将裂解液转移至离心管,4℃离心,10000×g,10min。转移上清至新的离心管内,弃去沉淀。
注意:涉及磷酸化作用研究时,可用PhosphoCruTM蛋白纯化试剂盒(sc-24964)富集纯化细胞溶解物中的磷酸化蛋白。
组织样品
l 称重组织块,并用干净的剃刀剪碎。冰冻组织可被切的很薄,并在含蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂的RIPA裂解液(sc-24948)中解冻。3ml冰预冷的RIPA/g组织。
l 杜恩斯匀浆器或超声进一步破坏使细胞均质化,温度维持在4℃。(可选择:加入30μl 10mg/ml PMSF(sc-3597)储存液/g组织。)冰上孵育30min。
l 将裂解液转移至离心管,4℃离心,10000×g,10min。弃沉淀。可加长离心时间获得更好的裂解产物。
注意:涉及磷酸化作用研究时,可用PhosphoCruTM蛋白纯化试剂盒(sc-24964)富集纯化细胞溶解物中的磷酸化蛋白。
B电泳
l 将样品(每个泳道全细胞提取物40-60μg,胞核提取物10-20μg或10-20ng纯化蛋白)与等体积2×电泳上样缓冲液(sc-24945)混合,煮沸2-3min。未用完的样品可保存在-20℃。
l 上样,10μl/1.0mm×0.75mm孔。
l 推荐使用Cruz MarkerTM分子量标准(sc-2035)。小胶(0.75mm)每孔上样2μl,大胶(1.5mm)每孔上样5μl。如用与Cruz MarkerTM一致的第二抗体,可看到用于检测试剂的内参条带。也可选择预染分子量标准(sc-2361)。
l 电泳步骤参考标准protocols。
l 根据厂家protocols,用电转装置将蛋白条带转移至NC膜或PVDF膜上。
注意:Cruz Blot SystemTM提供预制好的人或小鼠全细胞提取物和核提取物,或小鼠组织提取物。
C。Immunoblotting
l 用Blotto(BlottoA或B;用抗牛第二抗体时建议使用BSA)封闭膜上的非特异位点,室温孵育30-60min。也可选择用不含Tween-20的Blotto,在封闭容器内4℃过夜孵育。
l 如果使用的是磷酸化特异抗体,建议向封闭液和抗体稀释液中加入50 mM NaF(NaF:sc-24988)抑制磷酸化酶。
l 封闭好的膜与第一抗体(Blotto稀释)稀释液室温孵育1小时。(如果是磷酸化特异抗体,要用加了50 mM NaF的Blotto稀释液。)抗体最佳浓度根据滴度决定。建议起始稀释度为0.5-2.0μg/ml。用TBST洗膜3次,5min/次。
l 将膜与HRP或AP标记的第二抗体稀释液(Blotto稀释)室温孵育45min,稀释度1:500-1:2000。如果背景过高,第二抗体需进一步稀释(可达1:20000)。作ECL时,如果使用Cruz MarkerTM分子量标准(sc-2035),必须使用Cruz MarkerTM compatible secondary antibody作为可视化标准。
l TBST洗膜3次,5min/次,然后TBS洗膜一次,5min。
l 将膜与化学发光试剂(sc-2408)孵育。如果发光化合物用于可见光检测,必须用HRP标记的第二抗体。
2.IP
注意:本操作步骤可用于放射性或正磷酸盐标记的细胞。(放射性物质的使用及处理应遵循适当的条例如OSHA和NRC指导手册。)细胞标记必须在无待标记氨基酸残基或无磷酸盐的培养基中进行。建议标记前使细胞处于适当的饥饿状态。孵育培养细胞(100mm细胞培养皿上约80-90%
单层细胞汇合或培养瓶内含约2-5×107个悬浮细胞)。通常,用传代贴壁细胞或2-5×107个悬浮细胞可得到最优标记。
例如:除去培养基,加入含5%透析胎牛血清和100μCi/ml35S-蛋氨酸的无蛋氨酸培养基。37℃孵育1h。某些蛋白需延长标记时间(18hrs)。有必要用PBS洗涤细胞除去未结合的放射物。
l 向单层传代细胞中加入1-3ml冰预冷的RIPA(sc-24948),4℃孵育10min。对于悬浮细胞则向离心管中加入RIPA洗涤细胞沉淀。
l 用21号注射器针头或超声波反复裂解细胞。转移裂解物至微量离心管中。
l 可选择:用1.0ml冰预冷的RIPA冲洗细胞培养皿,与之前的合并处理。
l 4℃,10000×g离心10min。冰上转移上清(细胞溶解液)至新的微量离心管。
l 预处理细胞溶解液,加入1.0μg的control IgG(与第一抗体的种属来源一致)和20μl悬浮的(25%v/v)琼脂糖偶联物(A蛋白-琼脂糖,G蛋白-琼脂糖,A/G蛋白-琼脂糖,或L蛋白-琼脂糖)。4℃孵育30min。
l 2500rpm(约1000×g),4℃离心30s。
l 转移上清或约100-1000μg总细胞蛋白至微量离心管中。加入1-10μl(如0.2-2μg)第一抗体(抗体浓度应滴定测定),4℃孵育1-2hrs。或者,可加入20μl第一抗体琼脂糖偶联物,混匀,4℃孵育1hr-过夜;跳过下一步骤。
l 加入20μl适当的琼脂糖偶联物悬浮液(A蛋白-琼脂糖,G蛋白-琼脂糖,A/G蛋白-琼脂糖,或L蛋白-琼脂糖)。盖好管子,4℃振摇孵育1hr-过夜。
l 2500rpm(约1000×g),4℃离心30s,收集免疫沉淀物,小心吸弃上清。
l 用1.0ml RIPA裂解缓冲液或PBS轻轻洗涤沉淀2-4次,每次重复以上离心步骤。
l 最后一次洗涤后,小心吸弃上清,用40μl 2×电泳上样缓冲液(sc-24945)重悬沉淀。
l 样品煮沸2-3min,上样电泳分离免疫复合物,通过放射自显影观察结果。未用完的样品可保存在-20℃。
l 可选择:煮沸后,样品可经离心沉淀琼脂糖颗粒,然后SDS-PAGE分析上清。
3.IP/WB
l 按照之前描述的WB程序准备总细胞溶解物。
注意:如进行磷酸化研究,溶解物可用Santa Cruz的PhosphoCruTM蛋白纯化试剂盒(sc-24964)富集磷酸化蛋白。
l 预处理全细胞溶解物(可选择步骤),约1ml全细胞溶解物或组织提取物,加入0.25μg适当的control IgG(与第一抗体种属来源一致)和20μl悬浮的(25%v/v)琼脂糖偶联物(A蛋白-琼脂糖,G蛋白-琼脂糖,A/G蛋白-琼脂糖,或L蛋白-琼脂糖)。4℃孵育30min。
l 2500rpm(约1000×g),4℃离心30s。转移上清(细胞溶解物)至干净的微量离心管。
l 1ml细胞溶解物或约100-1000μg总细胞蛋白,加入10μl第一抗体琼脂糖偶联物,混匀,4℃孵育1hr-过夜。
l 可选择:如无第一抗体琼脂糖偶联物,1ml细胞溶解物加入1-10μl(如0.2-2μg)第一抗体(抗体浓度应滴定测定),4℃孵育1-2hrs。加入20μl适当的琼脂糖偶联物悬浮液(A蛋白-琼脂糖,G蛋白-琼脂糖,A/G蛋白-琼脂糖,或L蛋白-琼脂糖)。盖好管子,4℃振摇孵育1hr-过夜。
l 2500rpm(约1000×g),4℃离心30s,收集免疫沉淀物,小心吸弃上清。
l 用1.0ml RIPA裂解缓冲液或PBS轻轻洗涤沉淀2-4次,每次重复以上离心步骤。
l 最后一次洗涤后,小心吸弃上清,用40μl 2×电泳上样缓冲液(sc-24945)重悬沉淀。
l 样品煮沸2-3min。0.75mm×1.0mm的上样孔上样5-10μl。
l 电泳并按WB程序作免疫杂交。
注意:选择不同的第二抗体,55kDa重链和27kDa轻链IgG,可检测到第一抗体。如果以上步骤中采用第一抗体琼脂糖偶联物则第一抗体条带不明显。
4.免疫复合蛋白激酶测定
l 从100mm细胞培养皿(单层细胞80-90%汇合)移除培养基,PBS洗一次。
l 加入1-3ml冰预冷的RIPA裂解缓冲液(sc-24948),4℃孵育10min。(注意:RIPA裂解缓冲液对某些激酶效果不好。需要优化裂解液成分来保持激酶活性。)
l 用21号注射器针头反复抽吸使细胞破碎充分,转移至15ml离心管中。
l 用1ml冰预冷的RIPA裂解缓冲液,0.5%Triton X-100(sc-29112)冲洗培养皿,与原裂解液合并。
l 10000×g,4℃离心10min。4℃转移上清至新的离心管内。
l 转移1.0ml细胞提取物(上清)至1.5ml离心管中。加入1-10μl(0.2-2μg)第一抗体(抗体最佳浓度经滴定测定),4℃孵育1hr。
l 加入20μl适当的琼脂糖偶联物悬浮液((A蛋白-琼脂糖,G蛋白-琼脂糖,A/G蛋白-琼脂糖,或L蛋白-琼脂糖)。盖好盖子,4℃振摇孵育1hr-过夜。
l 2500rpm(约1000×g),4℃离心5min,收集免疫沉淀复合物。小心吸弃上清。
l 1.0ml /次RIPA或PBS洗沉淀4次,每次重复上述离心步骤。
l 20μl适当的蛋白激酶缓冲液重悬沉淀(如50mM HEPES(sc-29097),0.1mM EDTA(sc-29092),0.01%BRIJ 35(sc-29087)),0.1mg/ml BSA,0.1% β-巯基乙醇(sc-29086),0.15M NaCl(sc-29108)。缓冲液成分根据所研究的激酶调整。
l 加入10-1000ng多肽底物。该底物/酶/细胞系的多肽底物浓度应根据经验决定。
l 准备1ml ATP混合物:930μl适当的蛋白激酶缓冲液,6μl 50mM ATP,pH7.0,20μl 2.0 M MgCl2和44μl [γ32P]-ATP[10mCi/ml]。每个样品加入10μl ATP混合物,30℃孵育30min。冰上放置。
l 加入等体积2×电泳上样缓冲液(sc-24945)终止反应,样品煮沸2-3min。样品可离心沉淀琼脂糖微珠(可选择);分析上清。跑SDS-PAGE,通过放射自显影观察结果。未用完的样品保存在-20℃。检测中如用小肽底物,样品必须通过闪烁计数或其他标准方法而不是SDS-PAGE来分析。
嘉美生物是一家主要从事
Annexin V,信号转导抗体,重组人和动物蛋白,磷酸化抗体,
各种动物ELISA试剂盒,生物实验服务等研发与销售的高科技生物公司,免费热线:
400-698-4168。 业务咨询 QQ :
1213084081 
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温馨提示:不可用于临床治疗。